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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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5 _! M; i7 V" _8 Y+ V9 I, \! Q! l  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
- w: ^& [1 H+ E% h4 f0 z3 bAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) ) b  a0 ~7 N! C! J. p6 H
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
0 L0 e( R* f+ v- ~  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 . ~9 ~$ f+ ~9 A) _
1 材料与方法
" z! u. L; H' x5 @. I2 r, d2 K1 w1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 $ P( R" G5 H4 v  z) z9 L/ R
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 ! C/ O$ v! U% C' U0 `& T; s

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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 0 ]9 J* C; m; g6 l
7 H. ^$ q5 t1 g5 p) J
1 `' x0 e; v7 @* Q) V& ^( n
1 |& @. ^+ ~1 H+ D) o' z

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因素( X: `+ D7 ]! X4 U8 _
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
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1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 6 y; W2 v0 g* W& F2 O2 B2 @$ N6 t
2 结果分析 7 ^9 N: X* C2 z2 D" @0 H) z
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 " M+ O3 a4 X0 z. ~3 l4 c4 G0 k
表3  4株机油降解菌形态特征 ) c9 A, G/ L8 F

9 o3 Y% R: [+ U. w7 Q7 Y( g0 L/ z
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7 A) [9 O7 s/ r$ b形态特征. w9 |' f7 i8 W
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粉红0 h* N* Y6 r, E0 b4 q* t
淡黄4 E5 B( ]1 S& k  I2 `) ~7 C' a: }' Q
淡黄% t. [7 H8 l) V$ [; B5 ]
粉红
( b  u) f( w1 }
6 c& J! \/ V' F8 v' \5 e菌落形态: e0 {' Z2 S+ a- o- ?! P6 V
不透明,微隆起,全缘,0 F5 D. i- Z0 a. w; a
半透明,圆形& e  h$ X3 V# H
半透明,圆形,隆起,) [. v, X8 O+ ]3 N% W( {& s: v" n
不透明,米粒状突起,
+ t( a0 d# f& a" Z* J: t  {+ S( ~! f9 `
 
- q; @; S# S# }6 O光滑,有光泽
1 }# Z  \# K" E+ b! s光滑,较干燥
8 }: O7 y/ {7 y( d5 U: |# z光滑,有光泽+ M2 C) C$ B( P
较湿润
1 ]  m; `4 D; H  X+ I/ H$ t7 Q
) r% L+ }& y9 {  u6 B+ B菌体形态
+ P  j8 T. K) w3 _短杆: ~+ f+ Y, C- o( O) w$ J1 u( K) y
球形
- `& Z! ?$ H9 I5 }, y- K! E杆状) g! F2 [/ t7 F) c9 y6 ~% Z9 V- \; {
丝状
/ n. Y% n! G6 Y, i( b; N- T2 v0 `6 y) ~2 s. h8 h1 n
菌体大小/μm( ^. a7 _! v' h. K9 F' g
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
9 ]1 K% U# W8 U6 U; ~. FΦ0.3
& n# I- z8 c# z" W! x4 S(0.5-0.8)×(1.3-5.0)' x- }) K3 b: h' |
0.2×(6-60)4 y; m  V% l8 Y! G$ v
8 H5 K/ `7 A( _' b2 S7 f& O) r7 P
革兰氏染色
1 F5 _6 t2 j8 l$ h& H& @G
( {# X! Z! B  d" ^+ dG
; Z* l# z5 @/ I* |G
5 b$ W0 D3 n& CG
# k% E( U9 y- }/ x9 K- o
7 E# [4 ]+ G  e& Z) a) c. T1 J初步鉴定
3 ?7 F) a2 r5 v8 z: V& E' M! E黄杆菌属& R) A+ K: p1 h4 O5 @
微球菌属4 a+ h- L5 o5 {9 O
假单胞菌属
2 f5 d+ D2 w- }, ^4 v酵母菌属
* p1 O, J. `+ P1 Y/ W3 K2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 & M5 n7 b9 J/ u

# R+ w8 H& o4 y  W! t3 结论 ) E+ ?9 N" W" L8 Z$ j! c) ~
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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+ J: w) g1 V9 _" g* z  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。/ g, x8 b0 y6 Z
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