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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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/ ]7 r3 x2 x; k8 G+ \* M! i1 B  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03# e- w9 E  F* j0 t9 F; p; i# ^6 |
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......

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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03& F; Z& b: e# c2 o" i) h6 M
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) 0 D2 F+ \6 K) V& W
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
' s+ ~' S0 X0 h  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 # w9 ]7 v5 I3 _) v6 d/ q
1 材料与方法
  `! T& l  p% u' D& o* M( K1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 : C5 N" e7 ]& j0 F  ~" A
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 2 f' ]$ D. c8 c) o5 }: j

+ l. k  y  q: A0 ]  N( E1 g
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- w, _7 A; g2 b: r; X
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
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ρ(油)/(mg.L-1)
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2642 J" j- U) R2 q
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7.01 d$ f0 C- g, \- c
220
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680
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6 Q. P: D1 s# Z- H3 t* M$ W9 B! t182
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179
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 - T( D2 f" H- `4 q7 l' c( y
& a7 p- i, K8 Z. e
K37 \$ H8 Q/ {. N. X& }* q9 }
102$ i# J9 t: f* \
144
2 A: }4 N: a2 Z- ~5 W; F  Y8 W165
3 P( n5 Y7 x& l) Y, @/ C% r7 l 
! O8 W2 F0 c# X * O/ ]8 v- \  D- F
- u# a* H, J+ ?$ \4 S
R
8 B5 p: ?* o, N: s( ]3 o128
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( y+ J. J8 Q+ ]; h14& ?5 g8 K' V* l
 
& k8 v: ^1 q0 a+ n5 D4 p8 h! W 
' `; E0 _4 V# r表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 , e7 l3 ~* f6 ]- s9 r9 s; I

, Z$ R1 A! k) c" E9 X- Y9 B
& m- u" q" V: I) Q/ e
9 L3 l& q* j# |- X* s5 ?8 G  i8 w
分组号% D( o$ T# O; ]
因素9 ~, W! C' i# s/ T
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)+ E1 l" L) {* J4 N% T2 B  [! s
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
1 Y. _6 F# o: ^3 U& v& O# L/ E% C& O! \4 ~4 t1 J1 f4 _8 [
温度/: r9 \" Z5 f8 z
ρ(油)/(mg.L-1)8 m" A7 B' D. }# \
pH值8 \' S3 E) _9 o/ x7 K4 R

) s4 a* O6 W2 H5 c4 v' }: r1
' C; `8 }( ?3 r/ c) z( R3 |25, y  c1 I0 o' R; P
368
4 k/ {0 E( o( J4.0
+ }: _) A+ c- u% f69/ u* }( O, X7 X; a, E
2994 v4 \- H! W& [% p! T
" c4 \1 p! U9 F0 O3 s0 W' ~
2
9 j$ Z3 i: }1 R7 _257 @% S+ O' n+ }0 P
574
$ o. \  J# G( C4 c( V# U4 k' z6.0
6 Q! k* M8 u8 @% I; B) Q267
5 h  R1 _% H) u  S307
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253 N. \  z+ q$ }
767
& ^7 H8 {5 F$ Q- ]5 f2 S8.0( }$ W& o! X. Z6 o9 P7 c4 {
4794 r9 Z/ q3 Y; a4 q1 H9 K( J
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( a7 o: ], x2 b3 f9 G$ |
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314
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5747 X- B1 H$ Q, f, `/ V
8.01 a+ a* s) m2 ~: I! S; j
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226
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8 _% j, Z6 j2 ?2 s) c1 }4 B8 e ; Y: Y  s3 x, A5 ?4 X! |1 q
5 u# L4 a& f* h; N  s) k
K3
' ?, D3 M6 Q5 S226
- @9 y' n, |9 o7 C! M) |3 i4 ?1 h271
) K/ I2 Z4 k  I# D( y& |( r264
/ o" h# G/ e- n; E& U6 I ; s) i% J1 i) Y% J
 / O% ?' b& ^5 R+ j* m

3 b: o& C2 t& f9 T) B9 C$ RR: N, \9 ]: I% s4 s
735 _; v% ]& w7 ?6 z: M- O( a& P, w
16
" \' F) B2 C; O/ R) U5 T3 H25
5 i# {. `( d- } 
/ C$ @% j- G& u8 Q" l: N 
; j8 y3 a* i, F- R1 X3 W/ {" O1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 / K) L$ ?$ R/ M! n6 B( U
2 结果分析 # A# y& e" [* u9 b& W- K
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
- o$ P' W3 i6 h& a表3  4株机油降解菌形态特征
) L/ v2 M9 ]8 M5 A6 d$ a: ~- z: X# d$ k5 f( |/ k9 @( ?
* Z0 A. a, D6 K+ y4 L. r
0 v1 J) M, `3 s0 ~8 c
2 e% Q! T& c* o! B$ s
形态特征
! p/ F: Q0 V$ t* k7 _ZL1
+ F/ x) v6 H, s) W, v6 FZL2
2 \" ?6 [9 {! {6 x3 N3 _- @$ |* aZL3
& l2 B$ w: z; s6 q6 RZL4- k5 w: Q, b6 u8 R' M

$ ^  C* Z0 B' Y  ^) A" d3 T菌落颜色, ]5 J4 F9 y0 q. i9 {, s( V
粉红/ g2 K+ C" X+ S6 i
淡黄
, a5 Y- }* X# U6 I2 F, j. e8 ~( i" {淡黄
* J2 ?& l. J' W1 |. _粉红
$ L$ {3 `0 s9 Z9 V- V6 F4 a
) Z6 [) c' Q1 k) C  H菌落形态8 B; s* G8 m1 L2 s) T
不透明,微隆起,全缘,
" ~* N$ M: ~* I4 a半透明,圆形
+ a* A& O: @- d半透明,圆形,隆起,
5 K  Y5 m# ?: f& A: ]3 b/ D不透明,米粒状突起,
- r3 U3 [; J. m2 T+ k0 a; L
% T& f; [2 J' ~# R( o 4 M, ~$ e3 S# D
光滑,有光泽
3 t) b0 v3 h& X$ B. t光滑,较干燥" }% W2 k) s" S
光滑,有光泽+ H$ C, X" S# T  u$ [' O' q
较湿润
3 x! b" c, e# \" u# J7 J6 Z, ^3 `: f) |$ C+ ]
菌体形态% I* X8 z* \# {) X& ~' s& m
短杆
2 n6 \* A' S0 Q, c球形
, f5 ?7 U, E/ B# e2 Z8 L杆状
3 H$ K0 j* s3 }- [7 D) t, d丝状
% I2 b) l1 T- V# c' P1 I, u0 N/ W) J! |; A
菌体大小/μm
% Y0 U, X0 P- o2 S, F) J(0.3-0.8)×(0.6-1.0)& l) {2 b9 h- m' d$ J/ L2 e$ C, W
Φ0.3
5 z$ t+ @# C( ~& W# Z- G) ?(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
3 S( }+ ^" A+ S  a! F0 G6 v0.2×(6-60)' f( T1 y. F' t' d3 y( J

, _" p! L+ n8 u4 z' a4 d6 S革兰氏染色" c  \5 z/ [( p0 r; q
G; r6 p5 w5 P9 l( a
G
% w- m; V2 W! P" }% y7 U/ PG
! w# X% i% c+ p- |" C4 eG. i$ F% j  v8 n) B

$ B6 v1 [9 [- Y5 p5 W. @5 j2 q) ^初步鉴定
* T2 r  b5 q" E- _& r- q黄杆菌属3 Q1 U+ i2 w, o5 H5 }6 Y( p
微球菌属/ F  Q* @- S& f6 @+ }* s1 @$ x
假单胞菌属
9 `% F  q& Y; {' x. }5 G酵母菌属
$ ?% s8 h! o: a, |' S  }2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 1 K& w4 q  z6 `5 U& i- i

; [( J3 y) q! r: _/ ?2 Q: S8 w( T3 结论
0 i# z3 n* x# D0 ?* J0 e* K7 {7 {  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。   G5 _: j# s7 U: c) k0 O, z
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  l2 B1 F; D4 A5 R: Y, ^  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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