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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03! X; _! P7 z) i- y
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-034 c4 z: R( h. G! o) Y
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) : A8 ~9 d: x/ l1 g( a5 O: R) @
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus 3 ]$ O: z( F1 r0 x
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 / F- |5 l3 F7 u+ F/ l! v
1 材料与方法 2 `  x& v/ g6 K8 x
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 2 w7 ]6 W, }+ d9 l9 U' }
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 7 e. C# ^' l7 j) Z
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分组号* e6 J6 c  u$ ]) S; c+ e
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
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1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 ; S" l8 W8 y" R) I
2 结果分析
' j1 y" x' d/ m- d9 T$ }! l5 }2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
4 d( X* U8 P1 R, e4 l, M, F表3  4株机油降解菌形态特征 + i  q6 i; U4 X( {  I

6 }; y! s8 D  g  a( @; a9 y4 `# T9 V4 p  {+ o+ m

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形态特征
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ZL2, O' D$ l- u( s( V! b6 t
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菌落颜色, |$ _* c6 @9 E& ?
粉红
  A9 a3 _* {( B( Z3 T0 p4 C, D% J淡黄
0 H% V2 v' D% n% c淡黄
7 }% ]4 ?" s9 r粉红  O7 r) M* P! B' i
5 ~" P3 }# s9 C
菌落形态5 F" c$ _$ t% p. h: ~+ c4 V2 _
不透明,微隆起,全缘,
  f( f/ h% N% B/ C( `. L/ k  `半透明,圆形! a. ^. p2 n9 Q$ D
半透明,圆形,隆起,( ^" c0 o: [& c5 d
不透明,米粒状突起," }+ X. X! R# N* w2 @- i

' \/ [$ `/ k; d. }' B % _8 V: X( s0 I! t
光滑,有光泽! J3 U8 k& g  q0 Q8 o, ^
光滑,较干燥
0 t4 t  z2 |) z$ |) U' r( ]; ~光滑,有光泽
5 u& F! C5 ]; S# J6 X较湿润
2 P4 {  N3 D3 ?8 W7 n. M- B1 ^' v1 F8 _3 K
菌体形态
$ ?, Q5 ]# N) ?1 Z) X9 C7 I3 b短杆) [- v$ F1 w6 T( J) _
球形
5 T( m$ _* \( u3 }1 ~5 ^! p杆状
# e+ {3 H- U3 J( m) [  j丝状4 S0 o/ F4 \$ F7 ?1 Z8 ~" ~
; N  Q9 `* O8 {- ?7 L9 h4 V
菌体大小/μm
9 c% d6 |9 \! p% ?- l(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
" r* b$ I5 }8 D$ ?Φ0.3
: E% I7 x  W3 g3 n$ Q+ \$ f* Z2 H(0.5-0.8)×(1.3-5.0)) K( E3 I& l' ^0 D
0.2×(6-60)7 ]/ ^$ J2 O$ ~$ T

: O) e0 k, p) y; u& e, G革兰氏染色9 L3 R- w1 @, e- m
G
# x/ S5 v$ c0 Z0 f1 W$ }# w" XG6 w6 ~% h( f* o3 T, O8 J& O
G
6 Z3 x. ?6 V2 Y. F# Q- K0 U) ~) QG2 p  A/ r( @9 ]7 K2 V( S: i
! M8 M+ Q( c+ y3 d" g
初步鉴定
7 L# L4 L, n; ^! p黄杆菌属$ q! ^7 |$ i& P  P' {* S+ n2 Q
微球菌属
* e+ m9 R& G" v4 i, N7 z5 ]假单胞菌属
- i! D4 ~- B/ M% Z/ ?$ j  _0 V- E酵母菌属8 {0 @) F, p5 G
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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8 S7 w2 l3 V8 L8 q; _* Z' h3 结论
, s$ A; K2 N1 e  }( ?  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。: p7 c7 b1 R" {* l4 E

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